基于SSR标记的澳洲坚果种质资源遗传多样性分析

井敏敏; 黄炳钰; 戴小红; 李栋梁; 陈晶晶

doi:10.3969/j.issn.1000-2561.2022.02.005

热带作物学报 >

2022 , Vol. 43 >Issue 2: 262 - 270

DOI: https://doi.org/10.3969/j.issn.1000-2561.2022.02.005

种质资源与遗传育种

基于SSR标记的澳洲坚果种质资源遗传多样性分析

井敏敏 ,
黄炳钰 ,
戴小红 ,
李栋梁 ,
陈晶晶 ^,^*

展开

中国热带农业科学院南亚热带作物研究所/国家热带果树种质资源圃/农业农村部热带果树生物学重点实验室,广东湛江 524091

* 陈晶晶,E-mail： chenjingjing0704@163.com。

井敏敏（1990—）,女,硕士,研究实习员,研究方向：热带果树种质资源。

收稿日期: 2021-05-10

要求修回日期: 2021-07-06

网络出版日期: 2022-02-22

基金资助

中国热带农业科学院基本科研业务费专项(1630062020001)

农业农村部物种品种资源保护费项目(125163006000160001)

国家热带果树种质资源圃平台运行服务项目(125163006000150007)

版权

收起

Genetic Diversity Analysis of Macadamia Germplasm Resources by SSR Markers

JING Minmin ,
HUANG Bingyu ,
DAI Xiaohong ,
LI Dongliang ,
CHEN Jingjing ^,^*

Expand

South Subtropical Crops Research Institute, Chinese Academy of Tropical Agricultural Sciences / National Field Genebank for Tropical Fruits / Key Laboratory of Tropical Fruit Tree Biology, Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Zhanjiang, Guangdong 524091, China

* CHEN Jingjing,E-mail： chenjingjing0704@163.com.

Received date: 2021-05-10

Request revised date: 2021-07-06

Online published: 2022-02-22

Copyright

Fold

摘要

澳洲坚果原产于澳大利亚亚热带雨林,是我国新兴的重要经济作物,其种质资源丰富,但遗传背景复杂,亲缘关系混乱。开展澳洲坚果种质资源遗传多样性分析,可拓展澳洲坚果种质资源创新利用途径,有效加快澳洲坚果育种进程。形态表型分析是最早用于种质鉴定和管理的标记之一,但易受环境因素影响。DNA分子标记技术在种质资源鉴定、遗传多样性分析中克服了传统表型分析易受环境影响的缺点。本研究采用9对高多态性SSR引物对91份国外引进以及自主选育品种（品系）澳洲坚果种质进行遗传多样性分析。结果表明,共扩增出73个等位基因位点,平均等位基因8个,平均基因多样性为0.689,平均杂合度为0.578,多态性信息含量PIC为0.453~0.792,平均值为0.659,表明91份澳洲坚果具有较高的多态性。UPGMA聚类分析表明,在遗传距离为0.33处,将91份澳洲坚果分为2大类,且其亲缘关系与地理来源无显著相关性,与主成分分析、Structure分析结果一致。本研究供试澳洲坚果材料群体内遗传变异显著高于群体间变异,且遗传成分来源单一,遗传结构较为简单。本研究为澳洲坚果种质的有效利用以及核心种质构建提供理论基础,为进一步加速澳洲坚果种质遗传改良以及分子辅助育种奠定基础。

关键词： 澳洲坚果; 种质资源; SSR标记; 遗传多样性

本文引用格式

井敏敏 , 黄炳钰 , 戴小红 , 李栋梁 , 陈晶晶 . 基于SSR标记的澳洲坚果种质资源遗传多样性分析[J]. 热带作物学报, 2022 , 43(2) : 262 -270 . DOI: 10.3969/j.issn.1000-2561.2022.02.005

Abstract

Macadamia, derived from the Australian subtropical rainforest, is a recently domesticated nut crop in China. Macadamia is rich in germplasm resources. However, the genetic background of Macadamia is complex and the genetic relationship is unclear. The genetic diversity analysis of Macadamia germplasm resources can expand the innovative utilization of Macadamia and effectively improve the Macadamia breeding process. Morphological traits are among the earliest markers used in germplasm characterization and management. However, phenotypic analysis is easily affected by environmental factors, resulting in deviation in the results. DNA molecular marker technology overcomes the shortcomings of traditional phenotypic analysis vulnerable to environmental impact in germplasm resource identification and genetic diversity analysis. The genetic diversity of 91 Macadamia germplasm introduced from abroad and self-breeding varieties (lines) was analyzed by 9 simple sequence repeat (SSR) loci in this study. The results showed that a total of 73 alleles were amplified by 9 pairs of SSR primers, with average of 8 per marker. The average genetic diversity was 0.689. The average heterozygosity was 0.578. The polymorphic information content (PIC) of each locus varied from 0.453 to 0.792 with an average of 0.659, indicating that Macadamia germplasm had high genetic diversity. UPGMA cluster analysis showed that the tested Macadamia resources could be divided into two groups at the genetic distance of 0.33. The first category includes all Macadamia tetraphylla species, Nelmak1-1, Nelmak1-2 and HAMC14, with a total of 19 germplasms. The second category contains 72 germplasms, mainly the cultivated varieties in Australia and Hawaii and self-breeding varieties (lines) in China. There was no significant correlation between genetic relationship and geographical origin. The results were consistent with population genetic structure analysis and principal component analysis. For population genetic structure analysis, Bayesian clustering modelling was executed in the Structure software using data generated by SSR marker-based profiling and diversity analysis of 91 Macadamia accessions. The highest log-likelihood was performed which provided the maximum peak at K=2, indicating that all genotypes represent two distinct clusters. In addition, the results showed that the genetic components of Macadamia germplasm were single and the genetic structure was relatively simple. AMOVA analysis showed that the genetic variation within Macadamia populations was 90% and that among populations was 10%, indicating that the genetic variation of Macadamia used in this research within population was significantly higher than that among population. This study provides a theoretical basis for the effective utilization of Macadamia germplasm and the construction of core germplasm. In addition, we therefore aimed to use the SSR markers to accelerate genetic improvement in Macadamia breeding program. These results lay a foundation for molecular marker-assisted breeding in Macadamia.

Key words： Macadamia; germplasm resources; SSR marker; genetic diversity

澳洲坚果（Macadamia F. Muell）,别名夏威夷果、昆士兰栗、澳洲核桃,属山龙眼科澳洲坚果属,常绿乔木,原产于澳大利亚昆士兰州东南部和新南威尔州北部、南纬25°~31°的沿海亚热带雨林^[1]。澳洲坚果果仁含油率达60%~80%,含蛋白质、糖类约9%,并包含人体所必需的氨基酸以及丰富的钙、磷、铁和维生素,被誉为“坚果之王”^[2],成为热带地区新兴的经济作物。澳洲坚果属包含4个种,其中Macadamia integrifolia Maiden & Betche、Macadamia tetraphylla L.A.S. Johnson及其杂交种广泛用于商业种植^[3]。我国澳洲坚果种植起步较晚,近年来,我国云南、广西、贵州等省（区）进行了大规模引种种植,2019年种植面积达24.5万hm²,全年总产量（未去壳果）0.494万t,全年总产值152 278.6万元（农业农村部农垦局统计）。澳洲坚果市场容量大,在我国具有很好的发展前景。

澳洲坚果种质资源丰富,但由于交叉引种、杂交、自然变异等因素,遗传背景复杂,亲缘关系混乱^[4]。因此,开展澳洲坚果种质资源的遗传多样性分析,可有效提升澳洲坚果育种进程。种质遗传多样性主要通过表型性状和分子标记等方式进行评价。20世纪90年代起,国外研究学者借助表型性状^[5,6]和同工酶^[7,8]开展了澳洲坚果遗传多样性分析。国内李文华^[9]对15个澳洲坚果品种幼龄期植物学形态进行观察,陈业渊^[10]编制了澳洲坚果种质资源描述规范,王维^[11]对21份澳洲坚果种质资源的主要生物学特性进行了观测研究,曾辉等^[12]主编出版了《澳洲坚果品种图谱》,涵盖‘H2'‘O.C'‘344'‘695'等主要栽培品种。

但是,表型性状受外界环境影响较大,且要求种植者具有较高的技术经验,其分析结果缺乏稳定性^[13]。近年来,分子标记技术发展迅速,AFLP^[14]、RAPD^[15]、RAF^[16]、ISSR^[17]、SSR^[18]、SNP^[19]等分子标记逐渐应用于澳洲坚果种质资源鉴定。

SSR又称微卫星序列,1~6个碱基单元重复序列,为共显性标记,具有多态性高、分布广泛、遗传稳定、操作简便以及引物通用等优点,广泛应用于作物遗传多样性分析、种质资源鉴定以及育种工作中^[20]。然而国内对澳洲坚果SSR分子标记的报道很少,仅报道了澳洲坚果SSR-PCR反应体系优化^[21],以及杂交F1代SSR鉴定^[22,23],未对种质资源进行系统性分析以及鉴定。本研究对国外引进以及自主选育品种（品系）的91份澳洲坚果材料,通过SSR分子标记技术进行遗传多样性分析,以期为澳洲坚果种质的有效利用以及核心种质构建提供理论基础,进一步为加速澳洲坚果种质遗传改良以及分子辅助育种奠定基础。

1 材料与方法

1.1 材料

参试澳洲坚果材料共91份（表1）,新鲜幼嫩叶片材料均采集于中国热带农业科学院南亚热带作物研究所,采用75%酒精擦拭干净,保存于-80℃备用。

表1 供试澳洲坚果材料

Tab. 1 Materials of macadamia

编号 No.	种质名称 Germplasm name	简称 Abbreviation	来源地 Origin	编号 No.	种质名称 Germplasm name	简称 Abbreviation	来源地 Origin
1	HAES854	854	夏威夷	47	实选50	NY50	中国
2	HAES861	861	夏威夷	48	HAES915	915	夏威夷
3	HAES333	333	夏威夷	49	实选122	NY122	中国
4	HAES900	900	夏威夷	50	实选4	NY4	中国
5	HAES936	936	夏威夷	51	HAES849	849	夏威夷
6	HAES819	819	夏威夷	52	B135	B135	中国
7	HAES847	847	夏威夷	53	实选10	NY10	中国
8	HAES826	826	夏威夷	54	特殊种1	Te1	澳大利亚
9	HAES812	812	夏威夷	55	特殊种2	Te2	澳大利亚
10	实选203	NY203	中国	56	特殊种3	Te3	澳大利亚
11	HAES788	788	夏威夷	57	特殊种4	Te4	澳大利亚
12	HAES344	344	夏威夷	58	实选58	NY58	中国
13	HAES294	294	夏威夷	59	实选81	NY81	中国
14	南亚1号	NY1	中国	60	实选128	NY128	中国
15	南亚2号	NY2	中国	61	实选133	NY133	中国
16	南亚3号	NY3	中国	62	HAES660	660	夏威夷
17	南亚12号	NY12	中国	63	实选114	NY114	中国
18	南亚116号	NY116	中国	64	实选131	NY131	中国
19	Beaumont 695	695	澳大利亚	65	实选97	NY97	中国
20	盈6	Y6	中国	66	实选117	NY117	中国
21	HVA38	A38	澳大利亚	67	实选33	NY33	中国
22	HVA16	A16	澳大利亚	68	实选118	NY118	中国
23	HVA4	A4	澳大利亚	69	实选74	NY74	中国
24	桂热 1号	G1	中国	70	实选88	NY88	中国
25	广西自选9号	G9	中国	71	HVA203	A203	澳大利亚
26	粗壳种3	Cu3	澳大利亚	72	Nelmak1-1	N1-1	南非
27	粗壳种4	Cu4	澳大利亚	73	Nelmak1-2	N1-2	南非
28	粗壳种5	Cu5	澳大利亚	74	HAES508	508	夏威夷
29	粗壳种2	Cu2	澳大利亚	75	A	A	中国
30	Own Choice	O.C	澳大利亚	76	B	B	中国
31	实选123	NY123	中国	77	D	D	中国
32	HAES741	741	夏威夷	78	G	G	中国
33	实选133	NY133	中国	79	HAMC14	H14	中国
34	实选125	NY125	中国	80	粗壳种1	Cu1	澳大利亚
35	实选136	NY136	中国	81	粗壳种6	Cu6	澳大利亚
36	实选109	NY109	中国	82	粗壳种7	Cu7	澳大利亚
37	实选126	NY126	中国	83	粗壳种8	Cu8	澳大利亚
38	实选119	NY119	中国	84	粗壳种9	Cu9	澳大利亚
39	盈8	Y8	中国	85	粗壳种11	Cu11	澳大利亚
40	盈357	Y357	中国	86	粗壳种12	Cu12	澳大利亚
41	实选24	NY24	中国	87	粗壳种14	Cu14	澳大利亚
42	实选95	NY95	中国	88	粗壳种15	Cu15	澳大利亚
43	HAES800	800	夏威夷	89	粗壳种17	Cu17	澳大利亚
44	HAES246	246	夏威夷	90	粗壳种20	Cu20	澳大利亚
45	实选55	NY55	中国	91	粗壳种21	Cu21	澳大利亚
46	实选37	NY37	中国

1.2 DNA提取与PCR扩增

样品DNA采用QIAGEN DNeasy Plant Kit（QIAGEN, Valencia, California, USA）提取,以0.8%琼脂糖凝胶检测DNA质量,并采用Nanodrop 1000分光光度计（Thermo Fisher Scientific, Wilmington, DE, USA）测定其浓度与纯度,稀释至20 ng/μL置于-20℃保存备用。本研究所用SSR引物参考NOCK等^[24]以及SCHMIDT等^[25]的文献,筛选出9对稳定性好、多态性高的引物（表2）,均由广州艾基生物技术有限公司合成。PCR扩增体系为20 μL,含20 ng DNA模板、0.5 U Taq DNA聚合酶、10 μL Taq PCR buffer、0.1 mmol/L dNTPs、2 mmol/L MgCl₂、0.2 μmol/L引物。扩增程序为：94℃预变性4 min,94℃变性30 s,退火30 s,72℃延伸40 s,28个循环;72℃延伸5 min;4℃保存。

表2 SSR引物序列

Tab. 2 Primer sequences used in SSR analysis

引物编号 Primer code	引物序列（5'-3'） Primer sequence (5'-3')	重复序列 Repeat motif	等位基因大小 Allele size/bp	退火温度 Annealing temperature/℃
MAC02	F: CCCAACTGGGTTTGCAAGGACCAA R: AGTAGCCGCGAGCTGATCGAAGAT	(CT)₈	288~312	60
MAC05	F: CATAGCATGAGTTTCAAGGGATAA R: ATTACAAACCCACTCTTCGATTT	(AAG)₁₀	284~338	60
MAC06	F: TTTCATCATTGATCATCATAGGTACA R: GAGCTAATACTTAACCAGGTGAACA	(AG)₁₁	319~350	55
MAC07	F: GATTTCCCTGTTTGGCATTG R: GCAATCAACACAAGCACCTG	(CT)₁₁	146~170	60
MAC010	F: GCAACTGGATCAGCACATAAGAAT R: TCCGATCATAGTCTTAGCATTTCA	(AG)₁₁	258~298	55
MAC011	F: AGAGGGCGAGATCCCTGACTCTGA R: TGAAATTTGGCGTGGGGAAAGCGT	(CT)₉	177~201	60
MAC014	F: TAAAGGGTTCTCAATCCTTGAATC R: GTAATTATCCCAACAGAACCCAAT	AG	336~390	60
Minμs04	F: GTGGACAGTACGAGATATCAAATG R: TTGAGGAATGAGAGGGCAAGG	(GT)₁₆	104~160	55
Minμs07	F: CTGATTTATGATGGTAAAGGAC R: GGTGAATCAAAGATTAGACAAC	(GA)₁₁	143~196	50

PCR产物稀释20倍,按照HT DNA Extended Range LABCHIP（PerkinElmer, USA）以及HT DNA 1k Reagent kit, Dual protocol（PerkinElmer, USA）使用说明,使用LabChip GX touch HT 24生物大分子仪（PerkinElmer, USA）对PCR产物进行毛细管电泳检测,并在电脑上读取条带大小数据。

1.3 数据处理

采用PowerMarker v3.25软件^[26]计算每对SSR引物等位基因数（allele number）、最大等位基因频率（major allele frequency）、基因多样性（gene diversity）、杂合度（heterozygosity）、多态性信息量（polymorphism information content, PIC）,并计算样本间Nei's遗传距离,采用非加权分组算术平均法（UPGMA）进行聚类分析,使用MEGA5.2软件进行聚类树绘制。

使用GenALEx 6.4.1计算群体间分化系数（between-population differentiation, F_st）、群体内近交系数（inbreeding coefficients of individuals relative to the sub-population, F_is）和群体间近交系数（inbreeding coefficients of individuals relative to the total population, F_it）,以及主成分分析、AMOVA分析^[27]。

采用Structure v2.3.4软件^[28]对91份澳洲坚果种质进行遗传结构分析,采用混合祖先模型（admixture model）和等位变异发生频率相关模型（allele frequency correlated model）,设置Length of Burn-in Period和Number of MCMC rers after buin in参数值分别为10 000和100 000,K值设置为1~10,重复5次,将Structure运行结果打包上传至Structure Harvester获得最佳K值,并采用CLUMPP软件进行重复抽样分析,最后采用Distruct1.1绘制遗传结构图。

2 结果与分析

2.1 SSR引物多态性分析

通过9对SSR引物对91份澳洲坚果种质进行PCR扩增,共检测到73个等位基因位点（表3）,各引物等位基因数量为5~11个,平均等位基因8个,最大基因频率在0.313~0.703之间,平均基因多样性为0.689,平均杂合度为0.578,多态信息含量为0.453~0.792,平均值为0.659。其中Minμs04引物等位基因为11,基因多样性为0.811,杂合度为0.824,多态信息含量PIC为0.792,各参数值相对较大,说明Minμs04具有较高的多态性,且杂合度较高,而多态性最小的MAC014基因多样性为0.483,杂合度为0.374,PIC为0.453。表明9对引物具有较高的多态性,可用于进一步研究澳洲坚果遗传多样性。

表3 9对SSR引物在91份种质资源中的多态性检测

Tab. 3 Polymorphic detection of 9 SSR primers in 91 Macadamia accessions

引物编号 Primer code	最大等位基因频率 Major allele frequency	等位基因数量 Allele number	基因多样性 Gene diversity	杂合度 Heterozygosity	多态信息含量 PIC
MAC02	0.456	7	0.711	0.418	0.672
MAC05	0.341	7	0.773	0.681	0.738
MAC06	0.703	7	0.486	0.264	0.466
MAC07	0.368	11	0.794	0.769	0.772
MAC010	0.313	9	0.807	0.615	0.782
MAC011	0.473	5	0.657	0.495	0.599
MAC014	0.700	7	0.483	0.374	0.453
Minμs04	0.357	11	0.811	0.824	0.792
Minμs07	0.533	9	0.676	0.758	0.652
均值	0.471	8	0.689	0.578	0.659

2.2 澳洲坚果种质UPGMA聚类分析

将91份澳洲坚果种质由9对引物扩增的多态性条带用PowerMarker 3.25软件以UPGMA法进行聚类分析（图1）。在遗传距离为0.33处,可将91份澳洲坚果种质分为2大类,第一大类包含所有粗壳种以及Nelmak1-1、Nelmak1-2、HAMC14,共19份种质。其中粗壳种12与粗壳种14亲缘关系很近,Nelmak1为南非选育的杂交品种,由于在实验过程中发现种植园内有2种不同基因型的种质均命名为Nelmak1,所以本研究以Nelmak1- 1、Nelmak1-2标记来区分,且HAMC14、Nelmak1-1、Nelmak1-2聚为一类,说明三者亲缘关系较近。第二大类包含72份种质,主要为澳大利亚、夏威夷主要栽培品种以及国内选育品种（品系）,其中由中国热带农业科学院南亚热带作物研究所选育的南亚系列和实选系列可明确其亲缘关系较近的栽培种,可由此推断其可能父母本。从聚类图中可发现澳洲坚果种质并不是严格按照地理来源进行分类,这说明其亲缘关系与地理来源可能无显著相关性。

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图1 基于SSR标记的91份澳洲坚果种质UPGMA系统聚类

Fig. 1 UPGMA dendrogram of 91 Macadamia germplasms

2.3 澳洲坚果种质主成分分析

澳洲坚果种质亲缘关系可通过主成分分析直观表现,种质间位置远近代表其遗传相似性,位置越近,亲缘性越近,位置越远,遗传差异越大。采用GenALEx软件对91份澳洲坚果种质进行主成分分析,从图2可以看出,来源于夏威夷、澳大利亚、中国的澳洲坚果种质之间存在交叉,说明部分种质亲缘性较近。

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图2 91份澳洲坚果种质主成分分析

Fig. 2 Principal component analysis of 91 Macadamia germplasms

2.4 基于贝叶斯聚类法的遗传结构分析

基于9对SSR引物获得的多态性数据,使用Structure软件中的贝叶斯聚类方法分析澳洲坚果群体遗传结构。根据Delta K折线图（图3）所示,K值为2时,Delta K最大,为278,即K=2为最佳值,表明91份澳洲坚果种质的群体遗传结构分析结果可分为2大类群（图4中红色代表类群1,绿色代表类群2）。类群1主要包含夏威夷的19份种质,中国44份种质,澳大利亚10份资源,以及南非1份资源。澳大利亚16份种质以及1份南非种质为类群2,并且此类群主要为粗壳种种质。根据各类群中主要颜色比率（Q值）,将Q>0.6视为材料血缘比较单一,而Q<0.6表示材料具有混合来源^[29],说明供试澳洲坚果种质遗传成分来源单一,遗传结构较为简单。

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图3 基于Delta K=mean(|L''(K)|)/sd(L(K))准则选择K值

Fig. 3 Model choice criterion Delta K = mean(|L''(K)|)/ sd(L(K)) of the Structure analysis of K value

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图4 91份澳洲坚果种质的群体结构分析

Fig. 4 Analysis on genetic structure of 91 Macadamia germplasms

2.5 群体遗传分化

由表4 F-统计结果显示,澳洲坚果种质遗传分化系数（F_st）变幅范围为0.035~0.299,平均值为0.168,群体内近交系数（F_is）变幅范围为-0.214~0.370,均值为0.075,群体间近交系数（F_it）为-0.171~0.550,均值为0.220,基因流（N_m）均值为1.941,说明91份澳洲坚果种质具有较高的遗传分化,且存在一定的基因交流。AMOVA分析结果表明,供试澳洲坚果群体内遗传变异为90%,群体间遗传变异为10%,表明澳洲坚果群体内遗传变异显著高于群体间变异。

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图5 分子变异分析结果

Fig. 5 Analysis of molecular variance

表4 F-统计与遗传多样性指数

Tab. 4 F-statistics and genetic diversity index

引物编号 Primer code	群体内近交系数F_is	群体间近交系数F_it	群体分化系数F_st	基因流N_m
MAC02	0.370	0.550	0.286	0.625
MAC05	0.021	0.313	0.299	0.587
MAC06	0.366	0.497	0.206	0.962
MAC07	0.013	0.132	0.120	1.834
MAC010	0.005	0.124	0.120	1.841
MAC011	0.087	0.280	0.212	0.929
MAC014	0.036	0.144	0.112	1.980
Minμs04	-0.007	0.114	0.120	1.834
Minμs07	-0.214	-0.171	0.035	6.879
均值	0.075	0.220	0.168	1.941

3 讨论

遗传多样性的研究对于种质资源的遗传改良、杂交育种以及创新利用具有重要意义,SSR标记在澳洲坚果上的应用,有助于了解澳洲坚果种质的遗传多样性以及亲缘关系,对澳洲坚果种质资源进一步挖掘与育种工作具有参考价值。NOCK等^[24]基于二代测序技术开发了12对澳洲坚果SSR分子标记引物,在22个品种中,12对引物均具有多态性,平均观察杂合度Ho和期望杂合度He分别为0.571和0.626,共检测到71个等位基因,并且能很好地区分4种澳洲坚果种质M.integrifolia、M. tetraphylla、M. ternifolia以及M. janseii。LANGDON等^[30]采用11对SSR引物对‘741'以及其他8个品种开放授粉后代进行父母本鉴定,指出不同品种澳洲坚果自交能力存在显著差异,并且澳大利亚种植最广泛的2个品种‘741'与‘344'之间存在一定亲缘关系。本研究采用9对SSR引物对91份澳洲坚果种质进行扩增,共检测出73个等位基因位点,基因多样性均值为0.689,PIC变化范围为0.453~0.792,平均0.659,说明9对引物可较好地鉴别澳洲坚果种质的遗传差异性。

本研究中91份澳洲坚果材料的UPGMA聚类、PCA主成分分析、以及Structure遗传结构分析的结果基本一致,且相互补充,采用的9对SSR引物将91份澳洲坚果种质分为2个类群,聚类结果表明,不同来源地种质聚集交错,与地理分布没有显著相关性,与谭秋锦等^[19]基于SNP分子标记的澳洲坚果种质遗传多样性分析中具有相同结论。同时Structure结果表明,供试澳洲坚果种质遗传成分来源单一,遗传结构较为简单,在其他研究中具有相同报道。HARDNER等^[31]报道全球澳洲坚果生产主要基于100年前夏威夷育种项目中优良种质的嫁接繁育,并且可能仅有一到三代来源于野生资源。NOCK等^[32]采用叶绿体基因组测序开发了SNP,对37份野生资源以及26份主栽品种进行亲缘关系分析,发现野生资源具有高水平的变异,但大部分夏威夷品种来源于位于昆士兰东南部Moolo和Mt Bauple的2个野生地点,来源非常狭窄。

F_st指数反映群体等位基因杂合性水平,用来衡量种群分化程度^[33,34]。本研究91份澳洲坚果种质F_st变化范围为0.035~0.299,平均值为0.168,表明澳洲坚果具有较高的遗传分化。O'CONNOR等^[35]采用SNP对29个母本及295个子代进行群体结构、遗传多样性分析,在子代中检测到高水平差异（F_it=0.518）以及较大遗传分化（F_st= 0.401）。AMOVA分析结果表明澳洲坚果群体间与群体内均存在遗传变异,但群体内遗传变异显著高于群体间变异。

我国澳洲坚果从20世纪80年代后期开始商业性种植,经过30多年发展,种植面积已居世界第一。目前我国已收集保存了较丰富的澳洲坚果种质资源,前期研究报道我国澳洲坚果种质资源遗传基础较窄,大致分为夏威夷类群和澳大利亚类群^[36],本研究中供试的我国澳洲坚果种质与夏威夷、澳大利亚主要栽培品种聚为一大类,除此之外,我国澳洲坚果品种多由开放授粉的实生后代选育,杂交育种进展缓慢,对各种优质、高抗等优良性状种质资源挖掘与利用、新种质创制研究较弱。这说明今后在澳洲坚果选育中,应该加大引进优异野生资源力度,增加种质的遗传多样性,拓宽遗传基础。

本研究采用9对SSR引物对91份澳洲坚果种质进行了遗传多样性分析,初步明确了供试澳洲坚果种质的群体结构,为澳洲坚果种质资源鉴定和创新利用提供数据支撑,并且对澳洲坚果杂交育种以及优良种质创制具有重要的指导意义。

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