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2021 , Vol. 42 >Issue 3: 629 - 636

DOI: https://doi.org/10.3969/j.issn.1000-2561.2021.03.003

组学与生物技术

调控萼脊兰类黄酮生物合成的MYB转录因子挖掘分析

  • 蒋素华 1 ,
  • 牛苏燕 1 ,
  • 袁秀云 1 ,
  • 梁芳 1 ,
  • 王喜蒙 2 ,
  • 崔波 , 1, *
展开
  • 1.郑州师范学院生物工程研究中心,河南郑州 450044
  • 2.郑州大学生命科学学院,河南郑州 450002
*崔 波,E-mail：

蒋素华（1983—）,女,硕士,副教授,研究方向：花卉分子生物学。

收稿日期: 2020-05-05

  要求修回日期: 2020-05-26

  网络出版日期: 2021-03-25

基金资助

河南省科技厅科技发展计划项目(172102110227)

河南省科技攻关项目(182102110357)

河南省重大科技专项(701290)

版权

版权所有，未经授权，不得转载、摘编本刊文章，不得使用本刊的版式设计。
收起

Mining Analysis of MYB Transcription Factors Related to Flavonoid Biosynthesis of Sedirea japonica

  • JIANG Suhua 1 ,
  • NIU Suyan 1 ,
  • YUAN Xiuyun 1 ,
  • LIANG Fang 1 ,
  • WANG Ximeng 2 ,
  • CUI Bo , 1, *
Expand
  • 1. Biological Engineering Research Center, Zhengzhou Normal University, Zhengzhou, Henan 450044, China
  • 2. College of Life Sciences, Zhengzhou University, Zhengzhou, Henan 450002, China
*CUI Bo,E-mail：

Received date: 2020-05-05

  Request revised date: 2020-05-26

  Online published: 2021-03-25

Copyright

Copyright reserved © 2021.
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摘要

本研究通过生物信息学方法,挖掘萼脊兰中可能调控类黄酮生物合成的MYB转录因子。从萼脊兰转录组数据库中筛选MYB转录因子,获得MYB的完整ORF,并对其蛋白理化性质、基序、功能注释、系统进化、表达特性等进行分析,并预测其功能。结果表明：在萼脊兰转录组水平上共鉴定出27个具有完整阅读框的MYB转录因子基因,萼脊兰MYB转录因子TRINITY_DN38485_c0_g4和TRINITY_DN38485_c0_g1基因均在花朵和叶片中表达上调,再根据与蝴蝶兰的系统进化关系与功能分析,预测这2个转录因子可能通过黄酮途径完成类黄酮生物合成。因此,MYB转录因子的研究对从分子水平上研究和调节类黄酮的合成具有重要意义,转录因子的应用是类黄酮生物合成基因工程中的新途径。

关键词： 萼脊兰; MYB转录因子; 次生代谢

本文引用格式

蒋素华 , 牛苏燕 , 袁秀云 , 梁芳 , 王喜蒙 , 崔波 . 调控萼脊兰类黄酮生物合成的MYB转录因子挖掘分析[J]. 热带作物学报, 2021 , 42(3) : 629 -636 . DOI: 10.3969/j.issn.1000-2561.2021.03.003

Abstract

MYB transcription factors that may regulate the biosynthesis of the flavonoids in Sedirea japonica were detected using bioinformatics methods. The complete ORF of MYB was obtained, and the physicochemical properties, motif, functional annotation, phylogenetic evolution, and expression characteristics of its proteins were analyzed, and its functions were also predicted. A total of 27 MYB transcription factor genes with complete reading frames were identified at the transcriptome level of S. japonica. MYB transcription factors TRINITY_DN38485_c0_g4 and TRINITY_ DN38485_c0_g1 were up-regulated in flowers and leaves. Then according to the phylogenetic relationship with phalaenopsis and functional analysis,it is predicted that the two transcription factors were involved in flavonoid biosynthesis through the flavonoid pathway. Therefore, the study of MYB transcription factor is of great significance to study and regulate the synthesis of flavonoids at the molecular level. The application of transcription factors is a new approach in the genetic engineering of flavonoid biosynthesis, the application of transcription factors is a new approach in the genetic engineering of flavonoid biosynthesis.

Key words： S. japonica; MYB transcription factors; secondary metabolism

转录因子（transcription factor）是一群能与基因5ʹ 端上游特定序列专一性结合,从而保证目的基因以特定强度在特定时间与空间表达的蛋白质分子。根据转录因子的作用特点可分为两类：第一类为普遍转录因子;第二类转录因子为组织细胞特异性转录因子[1,2]。人们在植物中已经找到了很多调控黄酮类次生代谢的特异性转录因子基因,主要包括编码MYB、MYC、bZIP、WD40蛋白和锌指蛋白等基因家族[3,4]。MYB基因家族广泛存在于植物中,是植物中最大的转录因子基因家族之一。在类黄酮生物合成过程中,MYB转录因子扮演着重要角色,可调控与类黄酮合成相关的酶基因的表达,从而有效地调控类黄酮物质的生物合成。根据MYB的DNA结合结构域中不完全重复序列的数目将其分为4个亚类：1R-MYB、R2R3-MYB、3R-MYB和4R-MYB。其中,R2R3-MYB是MYB转录因子家族中最大的亚类,其在类黄酮合成中的作用已被广泛研究[5,6]。目前拟南芥、水稻和小兰屿蝴蝶兰的MYB转录因子的数据库已经建成,为其他兰科植物的研究打下了良好的基础。
类黄酮在植物中广泛存在,并广泛参与植物中花色素的形成、花香的调节、抗病、抗紫外线损伤等多种生物学过程[7]。李崇晖等[8]对不同颜色的蝴蝶石斛兰品种花朵中的类黄酮组成进行分析,推测了蝴蝶石斛兰花中的类黄酮代谢途径。钟淮钦等[9]克隆了类黄酮-3ʹ5ʹ-羟基化酶基因（F3ʹ5ʹH）,并对该基因进行了表达分析。张加强等[10]鉴定了蝴蝶兰花色苷合成的相关基因,从转录组水平揭示蝴蝶兰花色苷生物合成的分子调控机制,结果显示类黄酮生物合成中差异基因为8个,综上所述,关于类黄酮代谢途径及相关基因研究的较多,而类黄酮合成相关的MYB转录因子在植物优良性状形成及微量次生代谢物的合成中的调控研究还较少。
萼脊兰（Sedirea japonica）为兰科（Orchidaceae）萼脊兰属（Sedirea Garay & H. R. Sweet）多年生植物,总状花序从叶腋中发出,花具橘子香气,花多且花期长,因此研究类黄酮对萼脊兰花香的调节具有重要意义。目前还未见萼脊兰MYB转录因子家族基因的研究报道,本研究基于测序的萼脊兰转录组数据库信息,筛选并鉴定出萼脊兰所有MYB转录因子,并对其进行理化性质分析、蛋白基序分析、系统发育树构建以及基因表达分析,这些结果为进一步探索萼脊兰MYB基因提供理论资料。

1 材料与方法

1.1 材料

萼脊兰采自郑州师范学院观赏、药用兰花河南省重点实验室兰花种植基地。萼脊兰MYB转录因子是本实验室构建的转录组数据库。蝴蝶兰MYB转录因子家族氨基酸序列下载于蝴蝶兰信息资源（PlantTFDB）数据库（http://planttfdb. cbi.pku.edu.cn/quick_search_result.php）。

1.2 萼脊兰MYB转录本筛选

高通量测序由上海生工生物科技有限公司完成,拼接组装后获得萼脊兰转录组,采用转录组基因ID搜索获取氨基酸序列,使用ORF Finder在线软件分析预测开放阅读框（ORF）,获得具有全长氨基酸序列的萼脊兰MYB转录因子家族蛋白基因序列。

1.3 蛋白基序分析、结构预测、GO注释

运用The MEME Suite 4.12.0程序分析萼脊兰MYB家族蛋白的基序;应用结构域在线分析软件PROSITE和SMART对保守结构域进行分析。选择具有完整ORF的萼脊兰MYB转录因子氨基酸序列,利用在线工具ProtParam对蛋白进行理化性质分析;利用在线软件SOPMA对蛋白二级结构进行预测分析。使用BLAST2GO软件对筛选获得的萼脊兰MYB转录因子进行功能注释分析。

1.4 系统进化树构建及功能分析

蝴蝶兰MYB转录因子的蛋白序列从PlantTFDB数据库中下载,完整的氨基酸序列用于进化分析。利用Clustal X程序和MEGA4对萼脊兰MYB家族蛋白的氨基酸序列和下载的蝴蝶兰所有MYB转录因子的蛋白序列进行比对分析,将比对结果采用邻接法构建系统发育树。
通过萼脊兰MYB转录因子与蝴蝶兰所有MYB转录因子构建的系统进化树,筛选获得与各个萼脊兰MYB转录因子相似性最高的蝴蝶兰MYB转录因子,然后通过分析预测MYB转录因子的分子功能。

1.5 萼脊兰MYB转录因子表达分析

基于转录组数据,获取萼脊兰MYB转录因子在叶、花蕾和花朵的表达量,采用HemI 1.0.3.7软件对MYB转录因子在各组织表达数据进行分层聚类分析。

2 结果与分析

2.1 萼脊兰MYB家族成员的获得

从萼脊兰转录组数据库中共筛选出55条MYB基因序列,片段大小为205~3982 bp。通过ORF预测全长氨基酸序列,发现27条序列具有完整的ORF,片段最短的为499 bp（TRINITY_ DN34588_c1_g2_i3）,编码的154个氨基酸;片段最长的为2461 bp（TRINITY_DN29682_ c0_g1_i1）,编码535个氨基酸。

2.2 萼脊兰MYB转录因子基序分析

利用MEME在线软件分析了27个萼脊兰MYB转录因子家族的10个基序,基序1由50个氨基酸残基组成,其中包含3个高度保守的色氨酸（W）残基,每个色氨酸之间间隔19个氨基酸,属于R2MYB结构域（图1C）;基序2由41个氨基酸残基组成,其中第1个色氨酸被苯丙氨酸（F）所代替,每个色氨酸之间间隔18个氨基酸,其他2个色氨酸残基高度保守,属于R3 MYB结构域（图1D）;萼脊兰21个转录因子包含基序1和基序2,这21条序列均包含R2R3结构域,该结构域是高度保守的,在该区域2（甘氨酸G）、4（色氨酸W）、8~9（谷氨酸E、天冬氨酸D）、12（亮氨酸L）、20（G）和38~44（赖氨酸K、丝氨酸S、半胱氨酸C、精氨酸R、亮氨酸L、精氨酸R、色氨酸W）等30个位点保守不变（图1）。进一步分析保守的motif序列特征发现,27个MYB转录因子均具有典型的HTH结构域。利用分析软件SMART分析发现,27个蛋白均具有DNA结合区-Myb结构域。
图1 萼脊兰MYB转录因子基序分析

Fig. 1 Motifs analysis of S. japonica MYB transcription factors

2.3 萼脊兰MYB家族蛋白理化性质分析

萼脊兰MYB家族蛋白的理化性质分析结果表明（表1）,27个MYB家族蛋白的平均相对分子质量为32 651.65,TRINITY_DN67618_c0_g1_i1编码蛋白的分子质量最小,为17 527.05;TRINITY_ DN29682_c0_g1_i1编码蛋白的分子质量最大,为58 852.81。等电点（pI）平均值为7.37,TRINITY_ DN43325_c1_g2_i2编码蛋白的pI最小,为4.67;TRINITY_DN30733_c0_g1_i1编码蛋白的pI最大,为9.93。其中有13个MYB家族蛋白pI小于7（偏酸性）,14个蛋白pI大于7（偏碱性）,说明大多数萼脊兰MYB家族蛋白表现为偏碱性。MYB家族蛋白的平均疏水性值均小于0,说明27个萼脊兰MYB家族蛋白均属于疏水蛋白。MYB家族蛋白二级结构特征预测结果显示,27个萼脊兰MYB蛋白均具有α螺旋、无规卷曲、延伸链和β转角4种构型,主要由α螺旋和无规卷曲构成（所占比平均值分别为32.28%和54.01%）,延伸链和β转角所占比例较小（所占比平均值分别为8.45%和5.25%）,TRINITY_DN43325_c1_g2_i2和TRI NITY_DN38485_c0_g4_i2基因编码蛋白α螺旋所占比例最大,其余25个MYB蛋白均表现为无规卷曲所占比例最大。
表1 MYB家族蛋白理化性质

Tab. 1 Physicochemical properties of MYB family proteins

基因ID号
Gene ID		 长度
Length/bp		 氨基酸数量
Number of amino acid		 相对分子质量
Relative
molecular mass		 pI 平均疏水性
Average
hydrophobicity		 α螺旋
Alpha
helix/%		 延伸链Extended
strand/%		 β转角
Beta
angle/%		 无规卷曲
Random
coil/%
TRINITY_DN35559_c2_g1_i6 958 225 24 583.65 9.20 -0.462 14.67 16.00 2.22 67.11
TRINITY_DN30097_c0_g2_i3 1400 341 36 781.49 8.41 -0.422 22.58 11.14 1.76 64.52
TRINITY_DN34588_c1_g2_i3 1541 321 36 462.71 8.96 -0.771 28.35 12.15 6.54 52.96
TRINITY_DN36931_c0_g1_i1 1241 354 38 528.85 6.22 -0.678 38.98 7.91 6.21 46.89
TRINITY_DN28436_c0_g1_i1 1330 317 35 278.52 5.16 -0.531 31.55 8.20 5.05 55.21
TRINITY_DN29682_c0_g1_i1 2461 535 58 852.81 5.27 -0.494 20.93 6.92 3.74 68.41
TRINITY_DN40180_c3_g1_i1 1808 409 46 527.69 7.98 -0.665 36.92 4.89 5.13 53.06
TRINITY_DN34430_c0_g8_i1 1308 280 31 415.45 5.81 -0.527 35.00 8.21 1.79 55.00
TRINITY_DN34430_c0_g3_i3 1776 307 35 103.88 9.08 -0.658 31.92 10.10 5.21 52.77
TRINITY_DN34510_c3_g2_i4 1233 340 38 683.86 5.47 -0.675 33.82 5.88 2.94 57.35
TRINITY_DN37111_c4_g4_i1 857 206 23 424.40 9.08 -0.809 39.81 5.34 5.83 49.03
TRINITY_DN34310_c2_g1_i1 977 219 25 847.85 9.38 -1.075 33.33 5.94 5.48 55.25
TRINITY_DN30733_c0_g1_i1 1038 186 20 492.16 9.93 -0.601 24.73 13.98 5.38 55.91
TRINITY_DN38485_c0_g1_i1 1365 262 29 544.79 8.85 -0.607 25.19 10.31 6.11 58.40
TRINITY_DN38485_c0_g4_i2 1162 217 24 953.05 8.44 -0.902 45.62 4.61 9.68 40.09
TRINITY_DN37834_c2_g2_i1 1153 237 26 945.97 5.22 -0.672 36.29 9.70 4.64 49.37
TRINITY_DN37373_c1_g1_i4 1689 335 37 628.48 8.90 -0.636 32.84 7.16 5.37 54.63
TRINITY_DN30584_c0_g1_i3 1308 324 36 070.02 6.32 -0.543 30.86 13.89 5.25 50.00
TRINITY_DN39867_c0_g4_i4 1585 314 34 512.80 8.27 -0.598 30.57 6.69 3.50 59.24
TRINITY_DN38870_c1_g6_i1 2089 352 39 367.45 6.02 -0.555 28.41 12.50 8.52 50.57
TRINITY_DN31796_c0_g1_i4 1092 235 26 119.42 8.61 -0.548 36.60 6.81 5.96 50.64
TRINITY_DN67618_c0_g1_i1 499 155 17 527.05 9.86 -0.594 39.35 7.74 5.81 47.10
TRINITY_DN43325_c1_g2_i2 1382 322 36 109.2 4.67 -0.763 42.86 11.49 11.18 34.47
TRINITY_DN37693_c3_g5_i1 1002 291 32 946.21 5.69 -0.603 25.09 4.12 4.81 65.98
TRINITY_DN35500_c2_g8_i1 948 289 32 509.84 6.30 -0.509 35.64 5.88 5.19 53.29
TRINITY_DN35500_c2_g6_i1 1056 291 32 272.41 6.19 -0.469 36.90 2.76 4.48 55.86
TRINITY_DN40718_c5_g1_i8 1763 201 23 104.66 5.72 -0.904 32.84 7.96 3.98 55.22

2.4 萼脊兰MYB转录因子的GO注释分析

GO注释分析表明（图2）,萼脊兰27条MYB转录因子序列中分别有22、27、27条被注释到生物过程、分子功能和细胞组分,所有的序列被进一步富集为27个功能类别,其中DNA结合功能（27个）、细胞核功能（27个）、转录作用（24个）、转录调节（17个）、转录因子活性（13个）、防御响应（9）、茉莉酸响应（6个）、花器官发育（6个）等功能组中包含的序列较多,水杨酸响应（5个）、细胞分化（4个）、盐胁迫响应（4个）、乙烯响应（4个）、脱落酸响应（4个）、赤霉素调控（3个）、锌离子结合（2个）、细胞壁生物发生（2个）、缺水响应（2个）、生长素响应（2个）、脱落酸激活信号通路调控（2个）、几丁质响应（2个）、对镉离子的响应（2个）、苯丙醇代谢过程的调控（2个）、茉莉酸介导的信号通路的调控（2个）、锌离子结合（2个）、水杨酸介导的信号通路调控（1个）、花药壁绒毡层发育（1个）、花粉精细胞分化（1个）等功能组中包含的序列较少。其中生物过程主要富集在细胞合成、生物响应和调控上,分子功能集中富集在结合和转录因子活性上,细胞组分主要富集在细胞核部分。综上所述,萼脊兰MYB转录因子通过结合到DNA区域发挥相应的调控功能,主要涉及植物的细胞过程、发育过程和物质代谢等过程。
图2 萼脊兰MYB转录因子功能注释

Fig. 2 Function annotation of S. japonica MYB transcription factors

2.5 萼脊兰MYB蛋白进化分析

为了研究萼脊兰MYB蛋白的进化关系并预测其功能,从PlantTFDB数据库中下载蝴蝶兰已有的11个MYB家族蛋白氨基酸序列,采用软件MEGA4构建萼脊兰MYB家族蛋白和蝴蝶兰MYB家族蛋白进化树。由图3可知,4个萼脊兰MYB家族蛋白分别与蝴蝶兰的MYB蛋白聚集在一起,5个蝴蝶兰的MYB蛋白聚在一起,且比较集中,说明萼脊兰MYB家族蛋白与蝴蝶兰MYB蛋白的保守性不是很高。
图3 萼脊兰MYB家族蛋白与蝴蝶兰MYB家族蛋白进化树

Fig. 3 Phylogenetic analysis of MYB protein in S. japonica and Phalaenopsis equestris

2.6 萼脊兰次生代谢相关MYB转录因子功能分析

通过构建萼脊兰MYB转录因子与蝴蝶兰所有MYB转录因子系统进化树,筛选同源性较高的蝴蝶兰MYB转录因子,然后分析MYB转录因子的分子功能。由表2可知,MYB转录因子基因TRINITY_DN38485_c0_g4_i2编码蛋白同源性较高的蝴蝶兰转录因子PEQU 10866,编码的蛋白为MYB8,推测其具有调控花色素沉积和参与调节类黄酮的生物合成的功能;TRINITY DN38485_ c0_g1_i1编码蛋白同源性较高的蝴蝶兰转录因子PEQU 23041,编码的蛋白为MYB6,推测其可能参与调节类黄酮的生物合成。TRINITY DN40180_ c3_g1_i1编码蛋白同源性较高的蝴蝶兰转录因子PEQU 05119,编码的蛋白为MYB10,推测其可能具有协调植物生长发育的功能;TRINITY DN43325 c1 g2 i2编码蛋白同源性较高的蝴蝶兰转录因子PEQU 30611,编码的蛋白MYB3,推测其可能具有抑制C4H基因表达的功能。
表2 萼脊兰MYB转录因子同源性较高蝴蝶兰MYB蛋白功能

Tab. 2 MYB protein function of P. equestris with high homology in S. japonica MYB transcription factors

萼脊兰MYB转录子基因ID
MYB TF gene ID of S. japonica		 同源蝴蝶兰MYB转录子基因ID
MYB TF gene ID of
homologous P. equestris		 同源蝴蝶兰MYB蛋白
MYB protein of
homologous P. equestris		 蛋白功能
Protein function
TRINITY DN38485 c0 g4 i2 PEQU 10866 MYB8 MYB7可能参与调控类黄酮的生物合成,在种子发芽中起着关键作用;MYB8可调控花色素沉积。
PEQU 03393 MYB7
TRINITY DN38485 c0 g1 i1 PEQU 23041 MYB6 MYB6可能是转录激活物对外界信号的反应,也可能参与调节类黄酮的生物合成;转录抑制因子参与调节对紫外线的保护。MYB4为类黄酮的生物合成途径的抑制子。
PEQU 23940 MYB4
TRINITY DN40180 c3 g1 i1 PEQU 05119 MYB10 MYB10协调植物生长发育的几个方面,如木质部的形成和木质部细胞的分化,以及侧根的形成所需要的下游靶基因的小网络具有调节气孔关闭的转录功能。与脱落酸（ABA）无关,对气孔孔径的调节起作用。
TRINITY DN43325 c1 g2 i2 PEQU 30611 MYB3 MYB3可能具有抑制C4H基因表达的功能。

2.7 萼脊兰MYB转录因子基因表达分析

基于萼脊兰转录组数据,获得萼脊兰MYB转录因子在叶、花蕾、花朵各个组织的基因表达量,并绘制热图（图4）。从图4可见,MYB转录因子在组织表达模式上存在差异,大多数成员在叶、花蕾、花朵中均有表达,表达模式呈现多样化。萼脊兰MYB转录因子中10个MYB转录因子基因在花朵中的表达上调,5个MYB转录因子基因在花蕾中表达上调,12个MYB转录因子基因在叶片中的表达上调,而萼脊兰类黄酮的代谢产物主要在花朵和叶片中积累。萼脊兰MYB 转录因子TRINITY_ DN38485_c0_g4和TRINITY_DN38485_c0_g1基因均在花朵和叶片中表达量上调,根据表达模式分析：萼脊兰MYB转录因子TRINITY_DN38485_ c0_g4和TRINITY_DN38485_c0_g1可能调节类黄酮的生物合成,这也与功能预测一致。
图4 萼脊兰MYB转录因子基因表达热图

Fig. 4 Gene expression heatmap of S. japonica MYB transcription factors

3 讨论

通过萼脊兰转录组数据分析,共筛选出55条MYB基因序列,片段大小为205~3982 bp。通过ORF预测全长氨基酸序列,发现27条序列具有完整的ORF。GO注释分析表明,萼脊兰27条MYB转录因子序列中分别有22、27、27条被注释到生物过程、分子功能和细胞组分。系统进化树分析发现,萼脊兰MYB家族蛋白与蝴蝶兰MYB蛋白的保守性不是很高。
类黄酮广泛存在于高等植物果实、花瓣和叶片等器官中,萼脊兰MYB 转录因子在组织表达模式上存在差异,在叶片、花蕾和花瓣中均有表达,表达模式呈现多样化。类黄酮的合成主要包括7个分支：花青素（anthocyanins）途径、原花青素（proanthocyanidins）途径、黄酮（flavones）途径、黄酮醇（flavonols）途径、异黄酮（isoflavone）和异类黄酮（isoflavonoids）途径、鞣酐（phlobaphenes）途径以及橙酮（aurones）途径[11,12]。预测萼脊兰MYB转录因子TRINITY_DN38485_c0_g4和TRINITY_DN38485_c0_g1可能通过黄酮途径调节类黄酮的生物合成。
除了对MYB蛋白功能的发掘,一些研究者还对其结构进行了深入研究,发现调控类黄酮合成的MYB转录因子大部分都是R2R3MYB转录因子[13]。蒋卉等[14]研究了蝴蝶兰响应病毒关键MYB家族基因,发现152个MYB家族基因中R2R3型有138个。本研究通过对萼脊兰蛋白基序分析发现,27个MYB家族基因种21个基因属于R2R3-MYB类基因,大部分也都是R2R3型转录因子,两者研究结果一致。R2R3-MYB类4个转录因子AtMYB3、AtMYB4、AtMYB7和AtMYB32均为类黄酮的生物合成途径的抑制因子[15,16,17]。日本龙胆GtMYBP3和GtMYBP4基因在拟南芥中的异源表达激活了内源黄酮醇生物合成基因的表达,导致幼苗中黄酮醇积累增加[18]。在拟南芥中,较早发现并证实的调控类黄酮合成的MYB转录因子基因为AtMYB12[19],同时,在其他物种中也发现了调控类黄酮合成MYB12的同源基因,如番茄SlMYB12[20]、龙胆花GtMYBP3和GtMYBP4[18]。萼脊兰RINITY_DN38485_c0_g4和TRINITY_DN38485_c0_g1同源的蝴蝶兰MYB 蛋白有MYB7,TRINITY_DN38485_c0_g1同源的蝴蝶兰MYB蛋白为MYB6和MYB4,同日本龙胆、龙胆、番茄和拟南芥的研究结果一致,说明萼脊兰的这3个预测的基因与类黄酮的生物合成密切相关。王雪霁等[21]研究发现39个PeMYBs基因在4种器官（根、茎、叶、花）中均表达,48个基因在不同器官中有特异性不表达现象,一些基因呈现器官特异性表达特点,与该研究萼脊兰MYB转录因子在组织表达模式上存在差异,大多数成员在叶、花蕾、花朵中均有表达,表达模式呈现多样化的结果一致。

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