欢迎访问《热带作物学报》,
热带植物基因组学与基因编辑专题

香蕉苯丙氨酸解氨酶基因家族的全基因组鉴定及表达分析

  • 杨会晓 1, 2 ,
  • 孙媛媛 1, 2 ,
  • 贾彩红 1 ,
  • 金志强 1, 2 ,
  • 徐碧玉 1 ,
  • 王卓 , 1, *
展开
  • 1. 中国热带农业科学院热带生物技术研究所/农业农村部热带生物技术重点实验室,海南海口 571101
  • 2. 南京农业大学园艺学院,江苏南京 210095
* 王 卓(WANG Zhuo),E-mail:

杨会晓(1993—),女,硕士研究生,研究方向:香蕉与枯萎病菌互作机制。

收稿日期: 2019-07-30

  要求修回日期: 2019-08-16

  网络出版日期: 2019-11-04

基金资助

国家自然科学基金(31501624)

海南省自然科学基金资助项目(318MS090)

现代农业产业技术体系(CARS-32)

版权

版权所有,未经授权,不得转载、摘编本刊文章,不得使用本刊的版式设计。

Identification and Expression Analysis of Phenylalanine Ammonia- lyase Gene Family in Banana

  • YANG Huixiao 1, 2 ,
  • SUN Yuanyuan 1, 2 ,
  • JIA Caihong 1 ,
  • JIN Zhiqiang 1, 2 ,
  • XU Biyu 1 ,
  • WANG Zhuo , 1, *
Expand
  • 1. Institute of Tropical Bioscience and Biotechnology, Chinese Academy of Tropical Agricultural Sciences / Key Laboratory of Tropical Biotechnology, Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Haikou, Hainan 571101, China
  • 2. College of Horticulture, Nanjing Agricultural University, Nanjing, Jiangsu 210095, China

Received date: 2019-07-30

  Request revised date: 2019-08-16

  Online published: 2019-11-04

Copyright

Copyright reserved © 2019. Office of Acta Agronomica Sinica All articles published represent the opinions of the authors, and do not reflect the official policy of the Chinese Medical Association or the Editorial Board, unless this is clearly specified.

摘要

苯丙氨酸解氨酶(Phenylalanine ammonia-lyase, PAL)是催化苯丙烷代谢途径第1步反应的限速酶,广泛地参与植物生长发育过程中的各种生理活动。本研究通过生物信息学分析,从香蕉A基因组数据库中利用BLASTp筛选出53个可能的MaPAL编码蛋白序列。在NCBI分析蛋白保守结构域,发现仅有8个基因具有典型的PAL家族基因的特性。聚类分析结果表明香蕉MaPAL家族的8个基因可以分为Class I 和Class II两类。转录组数据表明,所有MaPAL基因在果实发育阶段高表达,MaPAL5参与果实采后成熟过程。在干旱、低温、盐处理的香蕉幼苗叶片中,MaPAL1MaPAL2MaPAL3MaPAL4MaPAL5成员均显著上调表达,MaPAL6号成员显著下调表达,这些成员参与香蕉响应上述非生物胁迫过程。8个MaPAL成员在枯萎病菌处理下均显著下调表达,表明在感病品种巴西蕉根系中,MaPAL基因的表达全部被Foc TR4抑制。本研究结果为分析MaPAL基因家族在香蕉果实品质形成和响应逆境中的作用提供了理论依据。

本文引用格式

杨会晓 , 孙媛媛 , 贾彩红 , 金志强 , 徐碧玉 , 王卓 . 香蕉苯丙氨酸解氨酶基因家族的全基因组鉴定及表达分析[J]. 热带作物学报, 2019 , 40(10) : 1949 -1957 . DOI: 10.3969/j.issn.1000-2561.2019.10.007

Abstract

Phenylalanine ammonia-lyase gene (PAL) is one of the key enzymes associated with plant growth and stress resistance in the secondary metabolism pathway. In this study, we used four L-phenylalanine ammonia-lyase genes in Arabidopsis thaliana as qurry and acquired 53 candidate PAL gene sequences by BLASTp in banana A genome database. And then we used conserved domain search of NCBI, only 8 gene members were found containing typical PAL domain in the protein sequence. In the phylogenetic tree, eight PALs could be classified into 2 groups, Class I and Class II. The transcriptome data showed that all MaPAL genes were highly expressed at fruit development stages. And MaPAL5 was differential expression in banana fruit postharvest stages. Under the drought, low temperature and salt stresses, MaPAL1, MaPAL2, MaPAL3, MaPAL4 and MaPAL5 members were up-regulated and MaPAL6 was down-regulated. All 8 MaPALs were down-regulated under the Foc TR4 infection. The results suggested that all MaPAL genes played important roles in banana fruit development and ripenning, responding to abiotic and biotic stresses. This study would provide a theoretical basis for further exploration the function of MaPALs in banana fruit ripening and under stresses.

香蕉是多年生草本植物,是重要的热地亚热带经济作物。其果实富含淀粉和黄酮类物质,是人们重要的粮食和营养来源[1]。在香蕉生长过程中,幼苗会经常受到各种非生物和生物胁迫的影响,如干旱、低温、盐[2,3]和枯萎病[4],严重地影响香蕉果实的产量和品质。尤其是香蕉枯萎病,由于抗病育种无法满足香蕉产业的需求,且没有有效的化学防治手段,造成香蕉栽培面积不断地减少[5]。在香蕉中,次级代谢物质与果实的品质形成、抗非生物胁迫和抗枯萎病的关系密切[6,7]。苯丙氨酸解氨酶(phenylalanine ammonia-lyase, PAL, EC 4.3.1.5)催化保守的L-苯丙氨酸转化为反式肉桂酸,它是苯丙烷类代谢的第一个关键酶和限速酶[8]。PAL蛋白广泛存在于植物、真菌、酵母和藻类中。在植物基因组中,PAL编码1个小的多基因家族,分子量一般在220~330 ku,是一种酸性蛋白[9]。在植物中,多种次级代谢产物如花青素、木质素、激素、类黄酮和植物抗毒素等的合成都是源于苯丙烷类合成途径,PAL是该途径的第一个关键酶[10]PAL基因的表达受各种环境胁迫的影响,如病原菌侵染、紫外线、伤害和光照等的诱导[11,12]。此外,PAL在植物防御系统中起着重要作用,参与信号分子水杨酸的生物合成,水杨酸是植物系统获得抗性所必需的有机酸[13,14]。截至目前,PAL基因在多种植物中被发现,例如葡萄(Vitis vinifera L.)[15]、大豆(Glycine max (Linn.) Merr.)[16]、陆地棉(Gossypium hirsutum Linn.)[17]、甜瓜(Cucumis melo L.)[18]、玉米(Zea mays L.)[19]、苹果((Malus domestica)[20]、沙棘(Hippophae rhamnoides Linn.)[21]和核桃(Juglans regia L.)[22]等。在香蕉中,前期研究发现PAL参与香蕉果实抗冷[23],抗Mycosphaerella fijiensis侵染[24];在香蕉感染枯萎病菌后,PAL酶活性升高,且与香蕉的抗病性呈正相关[25]。截至目前,在香蕉中还未见PAL基因家族的全基因组分析的报道。
香蕉A基因组测序于2012年完成并公布测序结果[26],为在全基因组水平上对PAL基因家族进行分析鉴定、进化分析以及相关基因功能研究提供了数据支持。本研究通过生物信息学方法研究香蕉全基因组中的PAL基因家族的分类、系统进化关系、基因结构、基因表达等,以期明确PAL基因家族在香蕉果实发育和采后成熟,响应非生物和生物胁迫中可能发挥的作用,为深入研究香蕉苯丙氨酸解氨酶的功能奠定理论基础。

1 材料与方法

1.1 材料

以文献报道的拟南芥4个PAL的数据[27],在拟南芥数据库(http://www.arabidopsis.org/)中下载AtPAL的蛋白序列。以搜索到的拟南芥的AtPAL蛋白序列为查询序列(Query),在香蕉A基因组数据库(http://banana-genome.cirad.fr/)中,通过Blastp 搜索出香蕉的可能的PAL蛋白序列和相关基因注释文件。

1.2 方法

1.2.1 香蕉PAL基因的氨基酸序列属性分析 利用ExPASy Proteomics Server(http://www. expasy.org/)的ProtParam tool软件在线分析蛋白的基本理化性质,包括蛋白的等电点、不稳定系数、分子量、脂肪指数和疏水性等。采用Plant-mPLoc Server (http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/ plant- multi/#)在线预测分析MaPAL蛋白亚细胞定位情况。利用Gene Structure Display Server(GSDS)[28]软件分析内含子和外显子组成。
利用DNAMAN软件对MaPAL蛋白进行多重序列比对,依据比对结果鉴定MaPAL基因的旁系同源对[29]。旁系同源对基因必须满足以下2个条件:(1)2个基因序列比对,短基因序列与长基因序列的覆盖率大于70%;(2)2个基因蛋白序列的一致性大于70%[30]
1.2.2 系统进化分析 利用MEGA 6.0软件对香蕉8个MaPAL成员与其他植物PAL基因的蛋白序列进行系统进化树的构建,方法采用邻接法(neighbor-joining,NJ),采取以下参数设置:校验参数Bootstrap重复1000次,模式为p-diastance model,缺口设置为partial deletion[31]
1.2.3 MaPAL基因在巴西蕉果实成熟过程、响应逆境处理中的表达特征分析 从本实验室前期获得的巴西蕉转录组数据可获得包括巴西蕉果实的发育过程,以及谢花后0 d(0DAF)、谢花后20 d(20DAF)、谢花后80 d(80DAF-0DPH),果实采后成熟0 d(80DAF-0DPH)、8 d(8DPH)和16 d(16DPH);巴西蕉叶片在干旱(osmotic,200 mmol/L mannitol)处理7 d、低温(cold,4 ℃)处理22 h和盐(salt,300 mmol/L NaCl)处理7 d等非生物胁迫后的叶片和巴西蕉根系接种Foc TR4后0 d(0DPI)和2 d(2DPI)的根系等转录组数据,上述数据均上传至国家基因库(https://db.cngb.org/cnsa/)的CNGBdb数据库(登录号:CNP0000292)。从上述转录组数据中抽取PAL基因的表达数据。转录本丰度用RPKM(reads perkilo bases per million reads)值表示。提取PAL基因在果实中的数据以RPKM值表示;胁迫条件下的RPKM值通过取对数(log2)转换,利用MeV v 4.3软件作热图。

2 结果与分析

2.1 香蕉PAL基因家族全基因组鉴定及基本理化性质分析

以拟南芥PAL基因的蛋白序列为Query序列,通过Blastp软件在香蕉基因组数据库进行比对,利用NCBI Blastp比对和SMART验证获得8个香蕉PAL家族成员(表1)。8个PAL基因定位在Chr1、Chr2、Chr5、Chr8、Chr9和Chr 11号染色体上,其中Chr 5和Chr 11染色体有2个成员,其余染色体均为1个;按照上述成员在香蕉染色体的顺序和位置命名为MaPAL1~MaPAL8MaPAL家族基因的蛋白质的长度分布于700~782 aa;分子量分布在75.96~85.95 ku;等电点范围在5.76~6.23之间。不稳定指数分析发现8个MaPAL蛋白不稳定指数都小于40,为稳定蛋白[32]。利用Plant-mPLoc对MaPAL基因家族的蛋白质成员进行亚细胞定位预测分析,蛋白都定位于细胞质内。
表1 香蕉PAL基因家族成员基本信息

Tab. 1 Basic information of MaPAL gene family

基因名称
Gene name
基因ID
Gene ID
染色体编号Chromosome number 定位
Location
氨基酸数目 Numbers of amino acids
/aa
分子量Molecular weight/ku 等电点Isoelectric point 不稳定指数 Instability index 不稳定指数Instability index 亚细胞定位Subcellular localization
MaPAL1 Ma01_g04420 chr01 2938936 2941177 712 77.11 5.87 33.55 33.55 Cytoplasm
MaPAL2 Ma02_g00760 chr02 6331747 6334592 711 76.83 5.76 36.14 36.14 Cytoplasm
MaPAL3 Ma05_g03720 chr05 2748035 2750718 709 76.89 6.23 35.53 35.53 Cytoplasm
MaPAL4 Ma05_g20900 chr05 32610528 32613521 711 76.94 6.00 33.60 33.60 Cytoplasm
MaPAL5 Ma08_g14940 chr08 14871358 14873806 709 76.92 5.86 33.28 33.28 Cytoplasm
MaPAL6 Ma09_g15390 chr09 10719758 10722106 782 85.95 5.95 38.55 38.55 Cytoplasm

2.2 香蕉PAL家族基因结构、系统进化及PAL蛋白的结构分析

通过使用GSDS在线软件分析MaPAL家族基因的外显子/内含子构成发现,MaPAL1MaPAL2MaPAL3MaPAL4MaPAL5MaPAL7MaPAL8基因的外显子数目为2个,MaPAL6只有1个外显子(图1)。使用邻接法(neighbor- joining,NJ)构建系统发育树来研究MaPAL之间的进化关系。MaPAL家族可以明显分为2大类(图2),其中MaPAL1、MaPAL2、MaPAL3、MaPAL4、MaPAL5、MaPAL7和MaPAL8与拟南芥的相关成员聚集在一起,说明PAL与植物的单双子叶分化前就已经形成,MaPAL2与MaPAL3、MaPAL4、MaPAL5的蛋白序列相似性分别为98%、98%和99%,些成员间的相似性较大。而另一亚支是MaPAL6,该成员与拟南芥和水稻没有同源基因,与橡胶树等木本植物的PAL基因有较高的亲缘关系。多序列比对分析发现,所有MaPAL基因的氨基酸序列中都含有PAL的活性位点GTITASGDLV(L)PLSYIAG,在该位点中包含Ala-Ser-Gly组成的高度保守的亚甲基咪唑酮(MIO)亲电基团(图3)。上述结果说明在进化上PAL比较保守,而MAPAL6与其他成员可能具有不同起源。
图1 香蕉PAL基因家族结构

Fig. 1 Gene structure of MAPAL gene family

图2 香蕉、拟南芥、水稻PAL的系统进化树

Fig. 2 Neighbor joining phylogenetic tree of PAL in banana, Arabidopsis thaliana and rice

图3 香蕉PAL基因家族保守基序

下划线为PLA的活性位点。

Fig. 3 Conserved motif of PAL gene family in banana

The underline is the active site of PLA.

2.3 MaPAL在果实发育和采后成熟中的表达分析

对巴西蕉果实发育和采后成熟过程的5个关键点0DAF(抽蕾0 d)、20DAF(断蕾20 d)、80DAF-0DPH(断蕾80 d-采后成熟0 d),8DPH(采后成熟8 d)、14DPH(采后成熟14 d)进行了转录组分析(图4)。MaPAL1、MaPAL2、MaPAL3、MaPAL6、MaPAL7MaPAL8在果实发育阶段(0DAF、20DAF)表达量较高;但这些成员在果实采后成熟阶段几乎不表达。MaPAL4基因在果实发育和采后成熟2个阶段一直是高水平表达(RPKM>10),而且该成员在采后的表达达到显著差异表达(Log2 RPKM>1),表明该成员可能在香蕉果实发育和采后成熟中起着重要作用。MaPAL5在果实发育和采后成熟过程都不表达,表明该成员可能不参与香蕉果实发育和采后成熟过程。
图4 巴西蕉发育至成熟过程中PAL基因的表达

Fig. 4 Expression of PAL genes in Brazil banana during developing and postharvest ripening stages

2.4 MaPAL在香蕉响应胁迫处理的表达分析

图5所示,在低温处理条件下,MaPAL1、MaPAL3、MaPAL4、MaPAL5、MaPAL7MaPAL8显著上调表达;MaPAL2MaPAL6显著下调表达。在干旱条件下,MaPAL3、MaPAL4、MaPAL1、MaPAL5MaPAL7显著上调表达,MaPAL2、MaPAL6MaPAL8显著下调。在盐胁迫下,MaPAL2、MaPAL3、MaPAL4、MaPAL1、MaPAL5、MaPAL7MaPAL8显著上调表达,MaPAL6显著下调表达。在3种非生物胁迫条件下,我们发现MaPAL3、MaPAL4、MaPAL5、MaPAL1、MaPAL7MaPAL6均显著上调和下调,参与香蕉响应上述3种非生物胁迫。在枯萎病处理中,所有8个MaPAL基因全部下调表达,其中MaPAL5下调最明显。表明巴西蕉在遭受Foc TR4侵染后,全面抑制了MaPAL基因的表达。上述结果也表明PAL基因家族成员参与香蕉响应逆境的过程。
图5 巴西蕉在4种胁迫条件下PAL基因的表达

Fig. 5 Expression of PAL genes in Brazil banana under four stress conditions

3 讨论

PAL是连接初级代谢和苯丙烷类代谢、催化苯丙烷类代谢途径第一步反应的酶,是苯丙烷类代谢的关键酶和限速酶,苯丙烷类代谢途径的产物在植物生长发育和响应逆境过程中发挥着重要作用[33]。本研究对香蕉基因组中的PAL基因进行鉴定,并且进一步探讨了MaPAL蛋白的理化性质、基因结构、系统进化关系及其在果实发育、采后成熟、响应非生物和生物胁迫中的表达模式。本文在香蕉A基因组中共鉴定出8个MaPAL基因,与水稻(9个)[34]、杨树(5个)[35]和拟南芥(4个)[36]基因组中的PAL数量相差不大,表明PAL在植物中确实以小基因家族的形式存在[37,38]。在氨基酸长度、分子量及等电点方面8个MaPAL都与其他植物的PAL蛋白类似[39,40,41]。理化性质分析结果显示,8个MaPAL都是酸性蛋白质,与之前报道的PAL是一种酸性蛋白的结果一致[42]。序列比对发现,MaPAL结构高度保守,都含有1个由Ala-Ser-Gly组成的高度保守的亚甲基咪唑酮(MIO)亲电基团[43],这是PAL基因家族的特征序列。本研究预测所有的PAL均位于细胞质类,与前人的报道一致[37, 44],说明香蕉PAL基因在细胞质内发挥作用。在进化方面,MaPAL基因能分为两类,其中MaPAL1MaPAL2MaPAL3MaPAL4MaPAL5MaPAL7MaPAL8分为一个亚支,这些成员间具有较高的同源性;而MaPAL6单独与其他木本植物的PAL分为一亚支。这与其他物种结果类似[45]。上述特征表明MaPAL1~8确实属于香蕉PAL基因家族的成员。
果实的发育和成熟过程是香蕉品质形成的重要过程。次级代谢物质在该过程大量生成和转化[6]。PAL作为苯丙烷代谢和类黄酮生物合成途径的关键酶,在植物的发育过程中起着关键作用,覆盆子[46]和苹果[20]的PAL均参与果实的发育过程。本研究发现在果实发育过程中大部分的MaPAL基因都表达量较高,说明次级代谢物质的合成在这些香蕉果实发育时间点是很活跃的。而在果实采后成熟过程中MaPAL4成员高表达且显著差异表达,说明这个成员可能在采后成熟过程中起着重要作用。
植物在遭受干旱、低温和盐等非生物学胁迫时,会迅速积累ROS,造成氧化损伤[47]。类黄酮等物质在苯丙烷代谢途径中合成,具有较强的抗氧化活性,能清除ROS,保护植物。在植物遭受逆境因素(如高温、盐害、紫外线等)均能促使PAL基因表达量变化;番茄[48]、黄瓜[49]和半夏[50]PAL基因在非生物胁迫中显著上调表达[51]。本研究发现,大部分的MaPAL基因都参与香蕉响应低温、干旱和盐的胁迫;其中有5个成员以相同的方式响应上述3种非生物胁迫处理,表明MaPAL参与香蕉响应非生物胁迫过程,且在功能上可能具有一定的冗余,这与拟南芥4个PAL结果类似[27]
PAL基因参与植物响应病原菌过程[8, 24, 52-53],PAL酶活往往作为植物抗病的标志酶[25]。在拟南芥中,pal1/pal2/pal3/pal4的4敲除突变体表现发育不良和不育的表型,同时易感丁香假单胞菌(Pseudomonas syringae[27]。巴西蕉作为香蕉的主要栽培品种,易感枯萎病[4,5]。本研究中,接种枯萎病的巴西蕉根系中MaPAL基因的表达显著被抑制(图5),说明MaPAL基因参与香蕉响应枯萎病菌侵染的过程。酚酸类物质参与香蕉抗枯萎病的过程[7],在感病品种中抑制MaPAL基因的表达可以减少次级代谢物质的合成,影响抗病物质的合成。上述结果说明MaPAL基因可能在香蕉抗枯萎病中起着重要作用。

4 结论

基于香蕉A基因组的序列信息,获得8个MaPAL家族成员信息, 并完成系统进化分析。MaPAL家族基因在果实发育时期表达量较大, 而在果实成熟中只有MaPAL4差异表达;在响应非生物胁迫时,大部分MaPAL成员都参与香蕉响应低温、干旱和盐胁迫的过程;8个MaPAL基因在感病香蕉品种接种Foc TR4后表达均被抑制。说明MaPAL基因在香蕉响应逆境中起着重要作用。本研究结果为今后在香蕉中开展MaPAL调控次级代谢物质合成的遗传调控研究奠定了基础。
[1]
Aurore G, Parfait B, Fahrasmane L . Bananas, raw materials for making processed food products[J]. Trends in Food Science & Technology, 2009,20(2):78-91.

[2]
Mahajan S, Tuteja N . Cold, salinity and drought stresses: an overview[J]. Archives of Biochemistry and Biophysics, 2005,444(2):139-158.

[3]
Munns R . Genes and salt tolerance: bringing them together[J]. New Phytologist, 2005,167(3):645-663.

[4]
Ploetz R C, Pegg K G. Fungal diseases of the root, corm and pseudostem[M] //Diseases of Banana, Abaca and Enset. Wallingford: CABI Publishing, 2000: 143-159.

[5]
Ploetz R C . Fusarium wilt of banana[J]. Phytopathology, 2015,105(12):1512-1521.

[6]
Pandey A, Alok A, Lakhwani D , et al. Genome-wide expression analysis and metabolite profiling elucidate transcriptional regulation of flavonoid biosynjournal and modulation under abiotic stresses in banana[J]. Scientific Reports, 2016,6:31361.

[7]
Van den Berg N, Berger D K, Hein I , et al . Tolerance in banana to Fusarium wilt is associated with early up‐regulation of cell wall‐strengthening genes in the roots[J]. Molecular Plant Pathology, 2007,8(3):333-341.

[8]
Hahlbrock K, Scheel D . Physiology and molecular biology of phenylpropanoid metabolism[J]. Annual Review of Plant Physiol and Plant Molecular Biology, 1989,40(1):347-369.

[9]
Ohl S, Hedrick S A, Chory J , et al. Functional properties of a phenylalanine ammonia-lyase promoter from Arabidopsis[J]. The Plant Cell, 1990,2(9):837-848.

[10]
Dixon R A, Paiva N L . Stress-induced phenylpropanoid metabolism[J]. The Plant Cell, 1995,7(7):1085-1097.

[11]
Jorrin J, Dixon R A . Stress responses in alfalfa (Medicago sativa L.): II. Purification, characterization, and induction of phenylalanine ammonia-lyase isoforms from elicitor-treated cell suspension cultures[J]. Plant Physiology, 1990,92(2):447-455.

[12]
Leyva A, Jarillo J A, Salinas J , et al. Low temperature induces the accumulation of phenylalanine ammonia-lyase and chalcone synthase mRNAs of Arabidopsis thaliana in a light-dependent manner[J]. Plant Physiology, 1995(108):39-46.

[13]
Nugroho L H, Verberne M C, Verpoorte R . Activities of enzymes involved in the phenylpropanoid pathway in constitutively salicylic acid-producing tobacco plants[J]. Plant Physiology and Biochemistry, 2002,40(9):755-760.

[14]
Chaman M E, Copaja S V, Argandoña V H . Relationships between salicylic acid content, phenylalanine ammonia-lyase (PAL) activity, and resistance of barley to aphid infestation[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2003,51(8):2227-2231.

[15]
孙润泽, 张雪, 成果 , 等. 葡萄苯丙氨酸解氨酶基因家族的全基因组鉴定及表达分析[J]. 植物生理学报, 2016,52(2):195-208.

[16]
侯鹏, 粱冬, 张卫国 , 等. 苯丙氨酸解氨酶基因家族在大豆中的时空表达研究[J]. 作物杂志, 2016(2):57-62.

[17]
杨郁文, 李双, 黄俊宇 , 等. 陆地棉苯丙氨酸解氨酶家族基因的鉴定及分析[J]. 分子植物育种, 2017,15(4):1184-1191.

[18]
孙宇蛟, 陈欣, 崔浩楠 , 等. 葫芦科PAL基因家族生物信息学分析及甜瓜PAL4基因克隆[J]. 分子植物育种, 2018,16(15):4910-4920.

[19]
邓路长, 崔丽娜, 杨麟 , 等. 玉米苯丙氨酸解氨酶家族基因的鉴定与纹枯病的抗病分析[J]. 分子植物育种, 2019,17(3):891-897.

[20]
张丽之, 樊胜, 安娜 , 等. 苹果全基因组PAL基因家族成员的鉴定及表达分析[J]. 浙江农业学报, 2018,30(12):2031-2043.

[21]
吴亚楠, 李贺, 苏倩 , 等. 沙棘PAL家族基因的生物信息学分析[J]. 黑龙江农业科学, 2019(4):15-17.

[22]
Yan F, Li H Z, Zhao P . Genome-Wide Identification and transcriptional expression of the PAL gene family in common walnut (Juglans regia L.)[J]. Genes, 2019,10(1):46.

[23]
Chen J, He L, Jiang Y , et al. Role of phenylalanine ammonia‐lyase in heat pretreatment‐induced chilling tolerance in banana fruit[J]. Physiologia Plantarum, 2008,132(3):318-328.

[24]
Alvarez J C, Rodriguez H A, Rodriguez-Arango E , et al. Characterization of a differentially expressed phenylalanine ammonia-lyase gene from banana induced during Mycosphaerella fijiensis infection[J]. Journal of Plant Studies, 2013,2(2):35.

[25]
Wang Z, Li J Y, Jia C H , et al. Molecular cloning and expression of four phenylalanine ammonia lyase genes from banana interacting with Fusarium oxysporum[J]. Biologia Plantarum, 2016,60(3):459-468.

[26]
D’Hont A, Denoeud F, Aury J M , et al . The banana (Musa acuminata) genome and the evolution of monocotyledonous plants[J]. Nature, 2012,488(7410):213-217.

[27]
Huang J, Gu M, Lai Z , et al. Functional analysis of the Arabidopsis PAL gene family in plant growth, development, and response to environmental stress[J]. Plant Physiology, 2010,153(4):1526-1538.

[28]
Hu B, Jin J, Guo A Y , et al. GSDS 2.0: an upgraded gene feature visualization server[J]. Bioinformatics, 2014,31(8):1296-1297.

[29]
Fan S, Zhang D, Xing L , et al. Phylogenetic analysis of IDD gene family and characterization of its expression in response to flower induction in malus[J]. Molecular Genetics and Genomics, 2017,292(4):755-771.

[30]
Yang S, Zhang X, Yue J X , et al. Recent duplications dominate NBS-encoding gene expansion in two woody species[J]. Molecular Genetics and Genomics, 2008,280(3):187-198.

[31]
Tamura K, Stecher G, Peterson D , et al. MEGA6: molecular evolutionary genetics analysis version 6.0[J]. Molecular Biology and Evolution, 2013,30(12):2725-2729.

[32]
孔建强, 王伟, 郑晓东 , 等. 青蒿P450cDNA基因的克隆及生物信息学分析[J]. 中国中药杂志, 2007,32(21):2227-2231.

[33]
Harakava R . Genes encoding enzymes of the lignin biosynjournal pathway in Eucalyptus[J]. Genetics and Molecular Biology, 2005,28(3):601-607.

[34]
Yu X Z, Fan W J, Lin Y J , et al. Differential expression of the PAL gene family in rice seedlings exposed to chromium by microarray analysis[J]. Ecotoxicology, 2018,27(3):325-335.

[35]
Shi R, Sun Y H, Li Q , et al. Towards a systems approach for lignin biosynjournal in Populus trichocarpa: transcript abundance and specificity of the monolignol biosynthetic genes[J]. Plant and Cell Physiology, 2010,51(1):144-163.

[36]
Cochrane F C, Davin L B, Lewis N G . The Arabidopsis phenylalanine ammonia lyase gene family: kinetic characterization of the four PAL isoforms[J]. Phytochemistry, 2004,65(11):1557-1564.

[37]
Achnine L, Blancaflor E B, Rasmussen S , et al. Colocalization of L-phenylalanine ammonia-lyase and cinnamate 4-hydroxylase for metabolic channeling in phenylpropanoid biosynjournal[J]. The Plant Cell, 2004,16(11):3098-3109.

[38]
Olsen K M, Lea U S, Slimestad R , et al. Differential expression of four Arabidopsis PAL genes; PAL1 and PAL2 have functional specialization in abiotic environmental-triggered flavonoid synjournal[J]. Journal of Plant Physiology, 2008,165(14):1491-1499.

[39]
Cramer C L, Edwards K, Dron M , et al. Phenylalanine ammonia-lyase gene organization and structure[J]. Plant Molecular Biology, 1989,12(4):367-383.

[40]
Schomburg D, Salzmann M . Phenylalanine ammonia-lyase[M] //Enzyme Handbook 1. Berlin, Heidelberg: Springer, 1990: 999-1003.

[41]
Reichert A I, He X Z, Dixon R A . Phenylalanine ammonia-lyase(PAL) from tobacco (Nicotiana tabacum): characterization of the four tobacco PAL genes and active heterotetrameric enzymes[J]. Biochemical Journal, 2009,424(2):233-242.

[42]
崔建东, 李艳, 牟德华 . 苯丙氨酸解氨酶(PAL)的研究进展[J]. 食品工业科技, 2008,29(7):306-308.

[43]
Ritter H, Schulz G E . Structural basis for the entrance into the phenylpropanoid metabolism catalyzed by phenylalanine ammonia-lyase[J]. The Plant Cell, 2004,16(12):3426-3436.

[44]
Santiago L J M, Louro R P, De Oliveira D E . Compartmentation of phenolic compounds and phenylalanine ammonia-lyase in leaves of Phyllanthus tenellus Roxb. and their induction by copper sulphate[J]. Annals of Botany, 2000,86(5):1023-1032.

[45]
盖江涛, 沈建凯, 王鹏 . 主要作物中PAL基因家族的鉴定和序列分析[J]. 江苏农业科学, 2016,44(6):45-49.

[46]
Kumar A, Ellis B E . The phenylalanine ammonia-lyase gene family in raspberry. structure, expression, and evolution[J]. Plant Physiology, 2001,127(1):230-239.

[47]
Mittler R . Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance[J]. Trends in Plant Science, 2002,7(9):405-410.

[48]
Guo J, Wang M H . Characterization of the phenylalanine ammonia-lyase gene (SlPAL5) from tomato (Solanum lycopersicum L.)[J]. Molecular Biology Reports, 2009,36(6):1579-1585.

[49]
董春娟, 李亮, 曹宁 , 等. 苯丙氨酸解氨酶在诱导黄瓜幼苗抗寒性中的作用[J]. 应用生态学报, 2015,26(7):2041-2049.

[50]
王彤彤, 何志贵, 韩蕊莲 , 等. 干旱胁迫对半夏氮代谢相关酶活性的影响[J]. 浙江农业科学, 2018,59(7):1138-1141.

[51]
Treutter D . Significance of flavonoids in plant resistance and enhancement of their biosynjournal[J]. Plant Biology, 2005,7(6):581-591.

[52]
Mauch-Mani B, Slusarenko A J . Production of salicylic acid precursors is a major function of phenylalanine ammonia-lyase in the resistance of Arabidopsis to Peronospora parasitica[J]. The Plant Cell, 1996,8(2):203-212.

[53]
Shadle G L, Wesley S V, Korth K L , et al. Phenylpropanoid compounds and disease resistance in transgenic tobacco with altered expression of L-phenylalanine ammonia-lyase[J]. Phytochemistry, 2003,64(1):153-161.

文章导航

/